BD FACSDiscover™ A8 セルアナライザー

リアルタイムイメージング機能搭載のスペクトルセルアナライザーで、研究の深度と広がりを加速

Overview

BD FACSDiscover™ A8 セルアナライザーは、最先端のスペクトルフローサイトメトリーとリアルタイムイメージングをシームレスに統合した革新的な機器です。BD SpectralFX™ Technologyと BD CellView™ Image Technologyといった先進技術を1台に集約することで、これまで検出が困難だった単一細胞レベルの洞察と再現性の高い結果を、シンプルなワークフローで実現します。5レーザー構成(B-R-V-YG-UV)を採用し、最大78の蛍光検出器と8つの散乱・イメージング検出器を搭載しており、柔軟性と信頼性を兼ね備えて多用途な解析をサポートします。

主な特徴:

最適化された感度と解像度
イメージングモードと高速モードの柔軟な切り替え
温度コントロールとサンプルミキシングを備えたオートローダー
セットアップの複雑さを軽減するシンプルなワークフロー

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Features

BD FACSDiscover™ A8 セルアナライザーの高度なスペクトル解像度と画像パラメーター解析機能をぜひご活用ください。

BD SpectralFX™ Technology: 優れた感度と解像度を実現します。最適化されたハードウェア設計、システム認識型のアンミキシング、LEDキャリブレーションされたゲインインターフェースに基づく次世代のセットアップとQCにより、デフォルトのゲイン設定での常に高精度なデータを簡単に取得できます。
BD CellView™ Technology: リアルタイムイメージング技術により、フローサイトメトリー解析に空間的な次元を追加します。拡散率、最大強度、ラジアルモーメントなどの画像パラメーターに加え、散乱および蛍光画像とともに自動生成される12種類以上のパラメーターを提供します。
完全統合型オートローダー: 機器内に完全に統合されたオートローダーにより、プレートやチューブラックからのサンプル取得時の接続作業やトラブルを排除します。ハイスループットで信頼性が高く、温度コントロールと自動サンプルミキシングによりサンプルの品質を維持しながら、サンプルを無駄なく活用し、キャリーオーバーを最小限に抑えます。また、詰まりや気泡の自動検出・回復機能により、完全自動化を実現します。
BD FACSChorus™ Software: ソフトウェア：ステップバイステップのガイド付きナビゲーションの直感的なインターフェースを提供し、スペクトルパネルからのデータの最適化、取得、解析を容易にします。ソフトウェアに組み込まれたBD® Spectral Hotspot Matrixなどの視覚的でユニークなツールにより、操作性がさらに向上します。
流路系: デュアルモードの流体制御により、高速モードでは最大35,000イベント/秒、イメージングモードでは12,500イベント/秒のサンプル取得が可能です。純水を使用することで、従来のシース液が不要となり、液量ベースの取得やイベントレートの統合表示により、柔軟かつ高精度なサンプル取得を実現します。

Loader Data

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The new Integrated Autoloader with temperature control and sample mixing streamlines workflows delivering the consistency you need.

Determining cell suspension consistency through sample mixing and analysis

25 µl of Jurkat cells (1 million cells/ml) were analyzed from each well of a standard 96-well plate to determine cell suspension consistency throughout sample mixing and analysis. Plate agitation occurred every 4 wells. High consistency between plates was observed in the number of cells acquired per well.

Assessing Jurkat cell viability in 96-well plate

25 µl of Jurkat cells (1 million cells/ml) were analyzed from each well of a standard 96-well plate to determine impact of agitation on cell viability (7-AAD staining). Plate agitation occurred every 4 wells. No agitation controls were run before (green square) and after (red triangle) plate to determine baseline. A high percentage (close to a 100%) of viable cells were observed across the wells.

Determining impact of agitation on signal intensity

25 µl of PBMCs (1 million cells/ml) were analyzed from each well of a 96-well plate to determine impact of agitation on signal intensity. Plate agitation occurred every 4 wells. Consistent signal intensities were observed across the wells.

Checking PBMC carryover

100 µL of concentrated PBMCs cells (10 million cells/mL) were acquired from one well and 1 SIT clean was done before proceeding to the next well (automated without any manual intervention). 100 µL was acquired from the subsequent wells with PBS to measure carryover. <0/01% of sample carryover was observed.