细胞凋亡,细胞周期和细胞增殖

富含CD4的小鼠脾细胞用抗CD3/CD28培养
富含CD4的小鼠脾细胞和anti-CD3/CD28, IL-2, 以及 IL-4一起培养6天。获取的细胞用10 ng/mL IL-2+1 µg/mL 秋水仙胺处理4小时(左图)或24小时(右图),并用BD Cycletest™ Plus DNA试剂盒染色。
BrdU标记染色和整体DNA水平(7-AAD)的细胞群体的细胞周期分析
BrdU标记染色和整体DNA水平(7-AAD)的细胞群体的细胞周期分析
人PBMCs用anti-CD3/CD2刺激48小时后再用PMA+离子霉素刺激4小时,最后一个小时,加入BrdU。收集后的细胞后用BrdU染色方法进行染色。
使用VPD450与IL-2产品相关联的细胞增生
富含CD4+的小鼠脾细胞加入1 µM VPD450。10分钟后,细胞用抗CD3/CD28刺激。在收集细胞前4至6小时,细胞加入PMA,离子霉素和BD GolgiStopTM蛋白运输抑制剂。细胞在固定、打孔后,进行IL-2染色,并用BDTM LSRII流式细胞仪分析。
阿菲迪霉素处理后HeLa细胞的细胞周期分析

BrudU染色监控阿菲迪霉素(DNA聚合酶抑制剂)处理后海拉细胞的细胞周期分析。图片由BD Pathway™ 855生物成像系统获取,20倍放大目镜,图像经BD Attovision™软件合成处理。Hoechst - 蓝色, BrdU - 红色, Histone H3 (pS28) - 黄色, Tubulin - 绿色。


 
射频的剂量取决于通过Annexin V-BD Horizon V450检测到的细胞凋亡、坏死和死亡的结果

用Annexin V-BD Horizon™ V450检测用低剂量西妥昔单抗靶向金纳米粒子处理的胰腺癌细胞系,根据检测到的细胞凋亡,坏死和细胞死亡确定射频剂量。随着射频剂量的增加,温度随之升高,并从凋亡(右下图)转变成坏死(左上图)。

运用抗活性caspase-3抗体对凋亡和非凋亡细胞群进行流式细胞术分析
运用抗活性caspase-3抗体对凋亡和非凋亡细胞群进行流式细胞术分析

Jurkat T细胞(A,A1)和小鼠胸腺细胞(B,B1)未经处理(A,B)或经过喜树碱(A1)4小时,或小鼠Fas单克隆抗体,克隆Jo2(Cat. No. 554254)以诱导凋亡(B1)。细胞打孔,然后用结合了PE的活性caspase-3抗体(Cat. No. 557091)染色。未处理的细胞其活性caspase-3为阴性,然而诱导凋亡的细胞中约有一半的群体检测出了caspase-3。

本实验中,Jurkat细胞经过喜树碱处理。这是拓扑异构酶I的强力抑制剂和细胞凋亡的诱导剂。

本实验中,Jurkat细胞经过喜树碱处理。这是拓扑异构酶I的强力抑制剂和细胞凋亡的诱导剂。H2AX对于维持基因组完整性非常重要的蛋白质。H2AX的磷酸化经证实和DNA损伤水平有关。使用多色流式技术,对细胞增殖(BrdU),细胞凋亡(裂解PARP)以及DNA损伤(组蛋白H2AX PS140)进行评估。



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